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网络药理学分析药物靶点:从基因到PCR 大家好,我现在遇到了一点小麻烦,希望有经验的朋友能帮我解答一下。老师让我结合网络药理学来分析药物的潜在靶点,具体来说,就是要在PubMed上搜索这些靶点相关的基因。可是,我用genecard搜索的时候,出来的结果都是基因,而不是老师希望的靶点。我是不是理解错了老师的意图?我现在要做PCR,但不知道该怎么做,求大家指导一下! 根据老师的指示,我需要先通过网络药理学分析找出最可能的靶点,然后结合这些靶点分子的文献,挑选出10个基因。接下来就是做PCR了,订引物的时候,网上有很多引物设计网站,大家有没有推荐的? 希望有经验的朋友能帮我解答一下,真的很急!
如果研一的时候,有人告诉我这些就好了 嘿,大家好!今天想跟大家分享一些我在研究生期间发现的宝藏工具,真的是科研路上的好帮手。如果有人在我研一的时候告诉我这些,估计我的科研之路已经成功一半了! 1⃣️ 分子生物学软件:SnapGene 首先推荐的是SnapGene,这个软件真的是分子生物学实验员的必备神器。举个例子,以前设计一对引物需要花二十分钟,还得反复比对,生怕出错。现在有了SnapGene,一分钟就能设计出5对引物,效率提升不是一点点。 2⃣️ 数据分析软件:GraphPad 和 Origin 接下来是数据分析软件。GraphPad Prism8和Origin是我常用的两款。特别是GraphPad,做科研汇报和论文作图简直必备。以前我只会用Office作图,质量差不说,放到PPT上还不清晰,经常要改来改去。现在有了GraphPad,作图效率和质量都大大提升。 3⃣️ 修图排版软件:PS和AI 然后是修图和排版软件。Adobe Photoshop和Illustrator真的是绝配。论文图片的排版、修图微调都可以用这两个软件搞定。我自己写论文的时候,也是借助这两个软件进行排版设计的,方便又高效。 4⃣️ 实验protocol查询网站 最后分享几个靠谱的实验protocol查询网站。Bio-protocol支持中文,很多protocol都是中文的,非常好用。Nature Protocols、Cold Spring Harbor Protocols、JOVE视频教程、Current Protocols和ProtocolExchange都是非常权威的网站,基本上在实验室里导师没时间教你,师兄师姐不一定会的小技巧都能在这些网站上查到。 文献阅读小技巧 最后给大家一些文献阅读的小技巧: 文献查找分类:知网、谷歌学术、SCI-Hub、Web of Science、Pub Med等都是常用的检索工具。 文献泛读:先检索100-200篇相关文献,一般只看abstract部分,然后用有道翻译提炼重点,筛出20-30篇精读。 文献精读:先看abstract掌握主要思路,再看result了解作者观点,最后找出创新点,得到属于自己的ideas。 希望这些小工具和小技巧能帮到大家,让你们的科研之路少走弯路!如果你们有其他好用的软件或者工具,也欢迎在评论区分享哦!
RNA扩增失败?六大原因揭秘! 在进行RNA的PCR扩增时,如果操作无误,但扩增不成功,可能是以下原因导致的: 细胞类型选择不当:如果选择的细胞不表达目的基因或表达量很低,扩增自然不成功。此时,需要检查目的基因在哪些细胞中表达,挑选表达量较高的细胞,重新提取RNA并进行反转录和PCR扩增。 诱导表达不足:如果目的基因在天然状态下表达量很低,但可以在某些信号刺激下诱导表达,可以先用刺激物处理细胞,诱导目的基因大量表达,再提取RNA并进行反转录和PCR扩增。例如,干扰素刺激基因在Poly(I:C)刺激后容易扩增。 RNA提取问题:如果RNA提取步骤不当,导致RNA质量或浓度不高,可以优化提取步骤,提高RNA质量或浓度,增加模板量进行PCR扩增。 长片段PCR:如果目的基因太长,可以将目的基因分成两段进行PCR,然后通过overlap将两个片段连接起来。 引物设计问题:有时目的基因在N端或C端的G/C含量异常,导致没有合适的引物。可以先从其他位置设计引物将目的基因扩增出来,再设计新的引物将G/C含量异常的片段放到引物末端突出位置,以第一轮PCR的产物为模板进行第二轮PCR。 引物不特异:设计的引物不特异,可以回收目的基因大小的片段,或在平板上多挑几个克隆测序,其中可能有需要的基因(当然也会混杂其他不需要的基因)。 PCR片段短于预期:如果引物特异,PCR条带很亮但短于预期,可能是扩增了不同的转录本(isoform)。如果测序发现短的不多,可以将缺失的片段设计到引物上,通过PCR将缺失的片段插入全长。如果重复多次都是缺失较长的片段,可以换不同的细胞系提RNA反转录后再PCR。 长基因扩增困难:一般大于3000 bp的基因从细胞里扩增较难,短于1500 bp的通常都很好扩增。 希望这些信息能帮助你解决PCR扩增不成功的问题!
如何设计qPCR引物:实用指南 大家好!今天我们来聊聊如何设计qPCR(定量PCR)的引物。其实,qPCR的引物设计和普通PCR差别不大,都可以用NCBI来方便地设计。不过,由于qPCR鉴定的是mRNA的表达,所以在设计引物时需要特别注意以下几点: 第一步:打开NCBI 首先,打开NCBI(美国国立生物技术信息中心)网站,搜索你需要的基因(例如Lepr)。 第二步:找到基因卡片 点开基因卡片,找到最下方的mRNA和Protein描述。根据你的需求选择合适的Isoform,然后复制NM码。 第三步:进入引物设计页面 在NCBI的引物设计(Primer design)栏目输入刚才复制的NM码。我个人更喜欢下载cDNA文件,然后用SnapGene手动拉取引物,这样可以直接看到cDNA序列,更加直观。 第四步:确认引物CG值 在SnapGene中确认引物的CG值(大约50%),Tm值在60度左右。可以多设计几对引物,以防有些引子不工作。 希望这些小技巧能帮到大家,祝科研顺利!ꀀ
쐃R与RT-PCR的探秘之旅 쥜觔物技术的广阔天地里,PCR与RT-PCR都是不可或缺的工具。最近,我深入探索了这两种技术,尤其是RT-PCR,它究竟有何魅力呢? ᩦ先,RT-PCR与PCR的融合,使得在单个EP管中就能完成逆转录和聚合酶链式反应,这无疑大大简化了操作步骤。然而,这一步也带来了不小的挑战。每次转录一个RNA分子就需要消耗一个逆转录酶,这无疑增加了实验的成本和复杂性。 在NCBI的网站上,我找到了许多关于RT-PCR的详细资料。虽然我在理解引物设计方面还有一些疑惑,比如如何选择合适的exon-exon进行设计,以及克隆时如何间接设计引物等。但我相信,随着不断的探索和学习,这些难题都将迎刃而解。 ꦀ来说,RT-PCR以其独特的优势在生物技术领域占据了一席之地。虽然它的一些缺点也让实验者头疼不已,但正是这些挑战激发了我们的探索欲望。 PS:在学习之余,也别忘了欣赏一下美丽的风景,比如《铃芽之旅》中的美景,它们也能给我们的心灵带来愉悦和放松哦!
转录组学揭秘:基因表达之谜 转录组学与RNAseq技术 基因组是指对整个细胞DNA进行测序得到的数据,而转录组则是通过RNA测序得到的。基因的表达受到时间和空间的严格调控。为了研究疾病的发生过程、胚胎的发育过程或器官的再生过程,最直接的方法是比较这些事件前后基因表达的变化。 젒NAseq技术需要首先从组织样本中提取RNA。由于mRNA具有特殊的polyA尾巴结构,可以通过设计针对PolyA尾巴的引物来富集mRNA。然后,通过逆转录的方式将mRNA转化为cDNA文库,最后将cDNA文库送去测序。 会通过生物信息学工具比对到基因组上,确定这些转录本属于哪些基因。定量分析后,可以看到不同基因的表达量变化。
PCR实验全攻略:从引物设计到结果分析 大家好!今天我们来聊聊分子克隆中的PCR实验。上一期我们已经介绍了引物设计的基础知识,这一期我们就来聊聊PCR的具体操作步骤。 PCR反应体系:你需要准备什么?ꊊ首先,PCR反应体系需要哪些东西呢?每个实验室用的酶可能都不一样,所以最好还是看看你实验室用的酶的说明书。以下是一个常见的2㗐hanta Flash Master Mix酶的加样体系: 先加水:提前计算好每个样品的加水量,然后从大体积开始加,这样更准确。 加酶:根据说明书上的推荐量加入。 加引物:根据引物的浓度来决定。 加模板:如果是基因组或菌体,变性时间3分钟;如果是质粒或片段,变性时间30秒。 PCR反应程序设置:如何设置? PCR反应程序的设置也是关键。以下是一个常见的2㗐hanta Flash Master Mix酶的反应程序: 变性(Denaturation) 在95Ⰳ下变性30秒,让DNA双链解链成单链。这个步骤不需要修改,但变性时间可以根据模板的不同进行调整。 退火(Annealing) 在55Ⰳ下退火30秒,让引物通过碱基互补配对与单链DNA结合。退火温度可以根据引物的设计进行调整。 延伸(Extension) 在72Ⰳ下延伸1分钟,聚合酶开始合成新的DNA链。这个步骤一般不需要修改。 循环数设置 根据需要回收的片段大小,一般30个循环左右就够了。如果不需要回收,可以设置35个循环。 其他步骤 除了基本的PCR步骤,PCR仪还可以进行一些固定温度的孵育,比如37Ⰳ恒温酶切等操作。 小贴士 枪头只沾到一点点液体也没关系,一般都能成功PCR。但还是要确认枪头有没有吸到相应的小体积液体。 不同的酶延伸速度和温度可能不一样,需要根据具体情况调整。 希望这些信息对你有所帮助!如果你有任何问题或需要进一步的指导,欢迎随时留言讨论哦!
PCR引物设计指南:让你的实验更高效! 젥騮ᦘR实验的关键,以下是一些基本原则,帮助你设计出高效、特异的引物: 1️⃣ 引物长度:通常在15-30bp之间,大约20bp是最常见的选择。 2️⃣ 扩增跨度:理想的扩增跨度在200-500bp之间,但在特定条件下,可以扩增长达10kb的片段。 3️⃣ 碱基组成:G+C含量应在40-60%之间,太少会影响扩增效果,太多则容易产生非特异性条带。ATGC应随机分布,避免出现5个以上的嘌呤或啶核苷酸连续排列。 4️⃣ 避免二级结构:引物内部和两条引物之间应避免形成二级结构,特别是3'端的互补,以减少非特异性扩增。 5️⃣ 末端碱基配对:引物3'端的碱基,尤其是最末及倒数第二个碱基,应严格配对,以避免末端碱基不配对导致的PCR失败。 6️⃣ 酶切位点:引物中或能加上合适的酶切位点,被扩增的靶序列最好也有适宜的酶切位点,这对酶切分析或分子克隆非常有帮助。 7️⃣ 引物特异性:引物应与核酸序列数据库中的其他序列无明显同源性。每条引物的浓度应在0.1~1umol或10~100pmol之间,以最低引物量产生所需结果为佳,过高浓度会引起错配和非特异性扩增,并增加引物之间形成二聚体的机会。 遵循这些原则,你的PCR实验将更加高效、准确!ᰟ쀀
生物科学专业必备电脑配置清单 大家好!作为即将踏入生物科学领域的小伙伴们,选择一台适合自己的电脑至关重要。今天,我们来聊聊哪些电脑配置更适合我们的专业需求。 日常需求 在学习过程中,我们会用到各种工具来辅助完成任务,例如: Office三件套(Word, Excel, PowerPoint):用于撰写论文、处理实验数据和准备演讲课件。 文献管理软件Endnote:用于收集、管理和引用文献资料。 数据分析软件(如SPSS、Origin、GraphPad Prism):帮助我们进行统计分析和图表制作。 分子生物学软件SnapGene:进行DNA序列编辑和设计。 基因分析软件Primer:用于设计引物和分析基因片段。 化学绘图软件ChemDraw和KingDraw:绘制化学结构式。 医学影像处理软件Mimics:用于三维重建和模型分析。 编程语言(如C语言、Java、Python):对于研究中的数据处理和建模工作非常重要。 ᬤ 置建议 为了保证这些软件能够顺畅运行,我们需要关注以下几个硬件参数: CPU:中央处理器是电脑的大脑,对于运行复杂软件来说至关重要。推荐选择至少具有2.5GHz基础频率,且可以睿频至4.4GHz以上的处理器。核心数至少为六核,如果预算允许,八核或更多会更好。 内存:由于我们常常需要同时打开多个程序,所以至少需要16GB的RAM。这样可以避免电脑因内存不足而卡顿。 存储:建议选择512GB或更大容量的固态硬盘(SSD),最好是支持PCIe或NVMe协议的高速SSD,以保证文件读写速度快,系统运行流畅。 显示屏:考虑到我们需要长时间盯着屏幕,因此建议至少选择15.6英寸大小的显示器,并且分辨率至少达到1080p(Full HD),更高分辨率如2K会更加清晰舒适。 接口:确保你的电脑至少有两个USB 3.0端口,以便于连接外部存储设备或其他硬件。 电源:选择80W或90W的大容量电池,以保证长时间的续航能力。 ⚠️ 注意事项 最后,虽然Mac电脑在设计上很出色,但对于一些特定的生物科学软件可能存在兼容性问题,所以在选择时要慎重考虑。 希望这份指南能帮助大家挑选到最适合自己的电脑!如果你觉得这篇文章对你有所帮助,请给一个小小的点赞作为支持哦!
PCR扩增常见问题及解决方法详解 在进行PCR扩增实验时,可能会遇到各种问题,如片状涂抹带、引物二聚体、非特异性扩增等。以下是常见问题及解决方法: 片状涂抹带 可能原因: 酶量过多或酶的质量差 dNTP浓度过高 Mg2+离子浓度过高 退火温度过低 循环次数过多 解决方法: 减少酶量或更换另一来源的酶 降低dNTP浓度 适当降低Mg2+离子浓度 增加模板量,减少循环次数 引物二聚体 可能原因: 引物设计不合理 PCR体系中含有杂质 解决方法: 优化引物设计 使用高质量的PCR试剂和耗材 非特异性扩增 可能原因: PCR体系中含有杂质 PCR循环条件不合适 解决方法: 优化PCR循环条件 使用高质量的PCR试剂和耗材 其他常见问题 除了上述问题外,还可能遇到PCR产物不纯、扩增效率低等问题。针对这些问题,可以通过优化PCR体系、调整PCR循环条件、使用高质量的PCR试剂和耗材等方法来解决。 通过这些方法,可以有效解决PCR扩增实验中遇到的各种问题,提高实验结果的质量和可靠性。
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